Wawasan Mekanistik Tentang Perlindungan Saraf dan Peningkatan Memori yang Diinduksi Diosmin pada Tikus Asam Intracerebroventrikular-Quinolinic Model: Kebangkitan Fungsi Mitokondria Dan Antioksidan Bagian 2

2.8. Tugas Pengenalan Objek Novel (NORT).

Protokol standar diikuti seperti yang diberikan oleh Kumar dan Bansal [23].NORT adalah arketipe eksteroseptif yang tidak menguntungkan dan tidak bermusuhan yang digunakan untuk menilai memori rekolektif tipe kerja yang dieksploitasi melalui perilaku menyelidik impulsif hewan pengerat. Penyelidikan dilakukan di dalam bejana berbentuk kubus yang terbuat dari kayu lapis terbuka di atap (80 cm × 42 cm × 62 cm), ditempatkan di tempat yang tenang, diterangi oleh LED 60W untuk mengatur kecerahan yang konsisten di dalam bejana.

Hewan pengerat merupakan salah satu jenis mamalia kecil yang hidup di bumi. Mereka sering tinggal di padang rumput, hutan, dan tempat lainnya. Mereka menjalani kehidupan yang lembut dan pendek serta imut. Dibandingkan dengan organisme lain, hewan pengerat memiliki keunggulan yang kuat dalam ingatan, dan banyak penelitian menunjukkan bahwa ingatan hewan pengerat jauh melampaui imajinasi kita.

Otak hewan pengerat sangat fleksibel, terutama ketika menangani tugas-tugas yang berkaitan dengan penyimpanan informasi. Banyak percobaan yang menunjukkan bahwa daya ingat hewan pengerat bahkan bisa melebihi daya ingat mamalia besar lainnya. Dalam percobaan tersebut, beberapa peneliti memberikan banyak tempat, objek, peristiwa, dan informasi lain yang berbeda kepada hewan pengerat seperti tikus dan hamster, lalu mengamati reaksi dan pemrosesan informasi tersebut. Ditemukan bahwa hewan pengerat ini memiliki kemampuan mengingat yang sangat baik, dan bahkan dapat mengingat banyak informasi dan pemandangan yang berbeda, bahkan lebih baik daripada kebanyakan manusia.

Jadi mengapa hewan pengerat memiliki daya ingat yang lebih baik dibandingkan hewan lainnya? Hal ini tidak terlepas dari lingkungan hidup hewan pengerat. Hewan kecil ini seringkali hidup di lingkungan yang berbahaya, sehingga mereka harus belajar beradaptasi dengan cepat dan bertahan hidup. Untuk menjaga kelangsungan hidup dan reproduksinya, hewan pengerat perlu memahami perubahan lingkungan sekitar dan informasi seperti lintasan aktivitas hewan dan tumbuhan lain. Hal ini menuntut mereka untuk memiliki kemampuan observasi dan memori yang sangat baik agar dapat lebih beradaptasi dengan lingkungan hidup.

Selain itu, gaya hidup dan kebiasaan perilaku hewan pengerat juga dapat membantu meningkatkan daya ingatnya. Beberapa penelitian menunjukkan bahwa hewan pengerat suka mengumpulkan dan menyimpan barang, yang dapat meningkatkan daya ingat dan persepsi spasial mereka. Selain itu, hewan pengerat juga suka melakukan beberapa aktivitas rutin, seperti bergerak sepanjang rute tertentu dan melakukan jenis tugas yang sama. Perilaku rutin ini juga dapat membantu mereka memperkuat daya ingat dan kemampuan membentuk kebiasaan.

Dalam dunia biologis, hewan pengerat memiliki ingatan yang unik, dan mereka memiliki kemampuan observasi, ingatan, dan adaptasi yang kuat. Bagi kami, ingatan tentang hewan pengerat dapat berhubungan dengan kemampuan belajar dan ingatan kami. Kita dapat belajar dari hewan pengerat bahwa selama kita tetap berhati-hati, terus belajar, dan menumpuk dalam studi dan kehidupan kita, kita juga dapat memiliki kemampuan ingatan dan pembentukan kebiasaan yang sama baiknya dengan hewan pengerat. Hal ini menunjukkan bahwa kita perlu meningkatkan daya ingat kita, dan Cistanche dapat meningkatkan daya ingat kita secara signifikan, karena Cistanche juga dapat mengatur keseimbangan neurotransmiter, seperti meningkatkan kadar asetilkolin dan faktor pertumbuhan, yang sangat penting untuk daya ingat dan pembelajaran. Selain itu, Cistanche deserticola dapat meningkatkan aliran darah dan meningkatkan pengiriman oksigen, yang dapat memastikan otak memperoleh nutrisi dan energi yang cukup, sehingga meningkatkan vitalitas dan daya tahan otak.

Klik Ketahui peningkatan Memori

Benda kayu berbentuk silinder (putih) -, piramida (merah) -, dan kubus (hitam) (tinggi 12 cm) (dalam rangkap tiga yang identik) kokoh dan cukup berat sehingga tidak dapat digerakkan oleh hewan pengerat. NORT dilakukan pada hari ke-16 dengan 3 tahap (S): tahap aklimatisasi (S1), tahap perolehan (S2), dan tahap pemeriksaan pengenalan objek baru (retensi) (S3). Selama S1, tiga hari berturut-turut sebelum uji coba dilakukan untuk menemukan dasar lantai kapal yang kosong (5 menit) oleh tikus. Setelah menyelesaikan S1, individu hewan terbiasa dengan satu set item padat dalam tahap pembelajaran (S2).

Benda yang mirip kembar diposisikan dalam 2 sudut kapal yang berlawanan dan dipilih secara sewenang-wenang (celah 9 cm hingga 11 cm dari sisi benteng). Secara terpisah, seekor hewan pengerat diposisikan di tengah bejana menghadap berlawanan dengan dua benda padat dan diizinkan untuk menemukan dua benda serupa selama 5 menit. Mengarahkan moncong di dekat benda dengan jarak kurang dari atau sama dengan 2–3 cm atau kontak fisik dengan benda yang memiliki moncong tersebut dianggap sebagai tindakan investigasi.

Setelah S2, hewan pengerat ditempatkan di kandang rumah yang dilengkapi dengan istirahat antar percobaan (ITR) selama 60 menit.

Setiap benda padat yang ditawarkan di S2 ditukar dengan benda padat yang berbeda, dan hewan pengerat tersebut dipresentasikan kembali ke benda kembar, yaitu replika benda yang dikenal dan benda yang berbeda. Seluruh penggabungan dan posisi benda tersebut diimbangi menjadi mengurangi kemungkinan prasangka yang dipicu oleh kecenderungan terhadap lingkungan atau benda tertentu. Wadah dan benda padat dibersihkan dengan cermat (etil alkohol 15% dan kain kering) setelah setiap penyelidikan untuk menghilangkan tanda-tanda bau. Periode waktu yang dihabiskan untuk menemukan setiap item di S2 dan S3 didokumentasikan menggunakan stopwatch. .e durasi yang dihabiskan untuk menyelidiki dua item yang cocok di S2 (I1 � Ii1 + Ii2) dan durasi yang dihabiskan untuk menyelidiki dua item yang berbeda, yaitu akrab dan berbeda, di S3 (I2 � Ii3 + Ib) telah direkam. .e varians dalam durasi yang dihabiskan untuk menyelidiki item yang berbeda dan durasi menyelidiki item yang diketahui (Ib – Ii3 � DI) mengungkapkan retensi memori kolektif.

DI (indeks diskriminasi)/durasi S3 dalam menyelidiki item yang sudah dikenal dan yang baru (DI yang diamandemen) meningkatkan keberpihakan melalui varians dalam penyelidikan yang lengkap dan menunjukkan kecenderungan terhadap item yang berbeda dibandingkan dengan item yang sudah dikenal {DI � (Ib–Ii3 )/(Ii3 + Ib)}. Memori kolektif dinilai dengan mengukur keterampilan hewan pengerat untuk memilih item familiar/novel di S3 dan dinyatakan sebagai DI (diubah untuk periode investigasi keseluruhan di S3) [24].

2.9. Labirin Air Morris (MWM). Protokol standar diikuti, seperti yang diberikan oleh Kumar dan Bansal [25]. MWM menilai memori spasial dengan uji coba berenang, di mana hewan pengerat tersebut menemukan jalan keluar ke podium yang tersembunyi.

Sebuah tangki berbentuk lingkaran berwarna hitam (diameter 2 m, tinggi 0,6 m) diisi air (25 ± 1 derajat ) hingga kedalaman 0,3 m. .adalah reservoir perairan dipisahkan searah jarum jam menjadi 4 wilayah serupa (R1, R2, R3, dan R4) menggunakan dua serat nilon, dipasang tegak lurus pada perimeter atas tangki.

Sebuah mimbar (10,5 cm × 10,5 cm) ditempatkan di bawah air (1 cm di bawah air) di wilayah reservoir R4. Tempat mimbar tetap utuh sepanjang periode akuisisi. Setiap tikus diberikan empat putaran akuisisi serial (5 menit ITR) setiap hari. .e hewan pengerat dilepaskan secara perlahan ke dalam reservoir air yang menghadap dinding tangki, dengan lokasi yang bervariasi pada setiap percobaan dari R1-R4, R2-R1, R3-R2, dan R{{ 13}}R3 masing-masing pada hari 1 sampai 4, dan diberikan waktu 120 detik untuk mendeteksi podium bawah air. .e hewan pengerat terus beristirahat di podium selama 20 detik.

Kegagalan mendeteksi platform dalam waktu 120 detik menunjukkan penempatan tikus secara manual di platform, dan kemudian mereka diizinkan berada di platform selama 20 detik. Waktu latensi pelarian (ELT) adalah durasi penemuan podium tersembunyi di reservoir perairan. Pembelajaran spasial ditandai pada hari pertama vs. hari keempat ELT.

Dalam uji coba penyelidikan (hari ke-5), hewan pengerat menyelidiki reservoir selama 120 detik tetapi tidak mendapatkan podium. .e durasi rata-rata yang dikeluarkan di seluruh reservoir (4 wilayah) dicatat. Durasi rata-rata yang dikeluarkan dalam R4 (TSTQ: waktu yang dihabiskan di kuadran target) untuk menyelidiki podium tersembunyi dianggap sebagai indeks memori referensi. .pengaturan tangki yang relatif terhadap barang-barang di laboratorium yang bertindak sebagai tanda visual dan posisi penyidik ​​​​tetap tidak terganggu [26].

2.10. Estimasi Parameter Biokimia. Setelah menyelesaikan pemeriksaan perilaku, seluruh otak tikus dikumpulkan dan diposisikan di atas es batu yang telah dihaluskan, dilanjutkan dengan mandi dengan larutan garam beku yang disterilkan (isotonik308 mOsmol/l NaCl) untuk menghilangkan sisa-sisa dan darah.

Homogenisasi seluruh otak langsung dilakukan dalam buffer pemisahan beku (pH 7,4) dengan komposisi 215 mM D-manitol, 20 mM 2-[4-(2-hidroksietil )piperazin-1-yl]asam etanasulfonat, 1 mM 1,2-bis[2-[bis(karboksimetil)amino]etoksi]etana, 75 mM sakarosa, dan 0,1% BSA. .e homogenat disentrifugasi pada suhu 4 derajat menggunakan gaya 13000 × g selama 5 menit. .e pelet ditolak, dan supernatan dipisahkan menjadi dua bagian dan disentrifugasi kembali (4 derajat ) pada gaya 13000 × g selama 5 menit. .e pelet mitokondria mentah dipisahkan dan disentrifugasi lagi dalam buffer pemisahan dengan 1,2-bis[2-[bis(karboksimetil)amino]etoksi]etana pada 12.500 × g selama11 menit (4 derajat). .deposit semipadat yang diperoleh terdiri dari mitokondria yang tidak terkontaminasi diresuspensi dalam buffer pemisahan (pH 7,4) yang mengandung 75 mM sakarosa,20 mM 2-[4-(2-hidroksietil)piperazin-1- yl]asam etanasulfonat, dan 215 mM D-manitol [27].

Kemudian, fraksi mitokondria dari homogenat seluruh otak digunakan untuk menentukan penanda biokimia menggunakan metode standar.

2.11. Estimasi Kompleks Mitokondria

2.11.1. NADH: Aktivitas Ubiquinone Oksidoreduktase.

Tingkat aktivitas kompleks I (NADH dehidrogenase) diukur (nmol NADH teroksidasi/menit/mg protein) dengan mengikuti teknik King dan Howard [28]. .pembentukan NAD+ secara eoksidatif dari NADH disertai dengan reduksi sitokrom c. Campuran pengujian ini terdiri dari sitokrom c (10,5 mM), 6 mM -nicotinamide adeninedinucleotide (DPNH) yang dilarutkan menggunakan 2 mM diglisinbuffer, dan buffer diglisin (0,2 M, pH 8,5).

Fraksi mitokondria yang dapat larut dimasukkan ke dalam ramuan pengujian untuk memicu reaksi. Variasi kepadatan optik (OD) pada λmax � 550 nm diikuti selama 120 detik.2.11.2. Suksinat: Aktivitas Ubiquinone Oksidoreduktase..tingkat aktivitas suksinat dehidrogenase (kompleks II) diukur (nmol suksinat teroksidasi/menit/mg protein) dengan mengikuti teknik King [29].

Oksidasi asam suksinat dipicu oleh penerima elektron tiruan, kalium sianoferrat (K3Fe(CN)6). Campuran pengujian ini terdiri dari asam suksinat (0.63 M), 1% BSA, K3Fe(CN)6 (0.036 M), dan Na+-K+ [PO4]2- penyangga (0,23 M, pH 7,6). Fraksi mitokondria yang dapat larut dimasukkan ke dalam ramuan pengujian untuk memicu reaksi. Variasi OD padaλmax � 420 nm diikuti selama 120 detik.

2.12. Penentuan Biomarker Stres Oksidatif2.12.1. Zat Reaktif Asam iobarbiturat (TBARS). Untuk mengevaluasi TBARS (nmol per mg protein) [30], kombinasi analisis (jumlah akhir ∼4 ml) terdiri dari0.10 ml yang dihomogenisasi otak, 1,51 ml 4,6-dihidroksi-2-mercaptopyrimidine (0,8%), 200 μl SLS (8,18%), 1,49 ml asam glasialasetat (21%, pH 3,51), dan 0,71 ml air deionisasi dikenai pemanasan penangas air pada suhu 96 derajat selama 60 menit.

Butil alkohol/azabenzena dengan perbandingan 15:1 (5,1 ml) ditambahkan ke dalam ramuan analisis yang disentrifugasi pada 4,000 × gpower (10 menit), dan supernatan dipisahkan. Dengan spektrofotometer UV1700 berkas ganda (Shimadzu, Jepang), kromofor malondialdehid-4,6-dihidroksi-2-mercaptopyrimidine OD dinilai pada panjang gelombang (λmaks � 532 nm), dan ε � 1,56 × 105/M/cm (koefisien kepunahan molar) diterapkan untuk menghitung hasil tambahan 4,6-dihidroksi-2-mercaptopyrimidine.

2.12.2. Mengurangi Kadar Glutathione (Lc-Glutamyl-L-Cysteinyl-glisin). Prosedur Ellman [31] diterapkan untuk menilai kandungan L-glutathione (GSH). .e ramuan uji yang mencakup homogenat (1,1 ml) dan 1 ml asam 2-hidroksi-5-sulfobenzoat (5-SSA) 4% disentrifugasi (4 derajat ) selama 11 menit pada daya 2.500 × g .

Kemudian, 2,8 ml buffer Na+-K+[PO4]2- (51,2 mM, pH 7,77) dan {{10}}.21 ml 3-karboksi{{13 }}nitrofenil disulfida (0.12 mM, pH 7.89) dicampur dengan supernatan yang dipisahkan di atas (0.12 ml). Tripeptida (µmolGSH per mg protein) diukur dengan spektrofotometer sinar kembar UV1700 (λmax � 412 nm). menerapkanε � 1,36 ×104/M/cm.

2.12.3. Aktivitas Glutathione Peroksidase. Aktivitas glutathione peroksidase (GPx) (EC 1.11.1.9) dinilai dengan menerapkan teknik Mohandas dkk. [32]. .eanalisis campuran terdiri dari 100 µl 10% homogenat, 100 µl natrium azida (1,11 mM), 100 µl EDTA (1,13 mM),40 µl glutathione-disulfide reduktase (GSR, 1 IU/ml) (EC1.8.1.7), 10 µl H2O2 (0,28 mM), 40 µl Lc-glutamil-L-sisteinil-glisin (1,2 mM), 100 µl koenzim II garam tetrasodium tereduksi (0,22 mM ), dan 0,12 M 1,49 ml Na+-K+ [PO4]2-buffer (pH 7,4) dalam jumlah keseluruhan 2000 µl. Hilangnya tetrasodium tereduksi koenzim II pada λmaks � 340 nm didokumentasikan pada suhu 25 derajat.

Laju GPx dihitung sebagai nmol NADPH protein teroksidasi/menit/mg menggunakan ε � sebesar 6,22 ×103/M/cm.

2.12.4. Aktivitas Superoksida Dismutase. Tingkat aksi SOD (EC1.15.1.1) (unit per mg protein) dipertimbangkan oleh prosedur Kakkar dkk. [33]. .e ramuan reaksi yang melibatkan 0.3 ml homogenat, 100 μl 5-metilfenaziniummetil sulfat (197 μM), dan 1,3 ml natrium difosfat menggunakan 200 μl -nicotinamide adenine dinucleotide (DPNH)(780 μM) dan dihentikan 60 detik kemudian menggunakan 1 ml glacialCH3COOH dalam campuran ini.

Kuantitas kromogen yang dihasilkan dihitung dengan mencatat kekuatan warna pada λmaks� 56{{10}} nm.2.12.5. Aktivitas Katalase. Untuk menilai laju kerja katalase (EC1.11.1.6), perbedaan OD (λmax � 240 nm) dari ramuan yang dianalisis (3.0 ml) terdiri dari 50 μl sampel investigasi, 1,22 ml H2O2 (0,03 M) dalam buffer Na+-K+ [PO4]2- (pH7,91, 0,06 M), dan 1,63 ml 0,06 M Na+-K+ [PO4]{{33} } penyangga (pH 7,1) dicatat. Aktivitas katalase (µmol H2O2 terurai per menit per mg protein otak) dihitung dengan menerapkan ε � 43,6/M/cm [34].

2.12.6. Tingkat Nitrit Utuh. .e teknik Sastry dkk.[35] diterapkan untuk mengevaluasi nitrit seluruh otak (μmolper mg protein otak). Dalam tabung reaksi yang berisi 100 µl sampel investigasi, 145 mg amalgam tembaga-kadmium, 500 µl buffer H2CO3 (pH 8,89), 0,44 M 100 µl NaOH, dan 119,8 mM 400 µl ZnSO4 disentrifugasi pada 4.500 × gpower selama 10 menit, dan kelebihan cairan bagian atas (supernatan) dipisahkan.

Bahan kimia griess (50 µl) dimasukkan dalam 100 µl cairan berlebih. Setelah inkubasi 60 menit, OD (panjang gelombang λmaks � 548 nm) dicatat menggunakan spektrofotometer UV1700 berkas kembar (Shimadzu). Kurva khas natrium asam nitrit (0,02-0,2 mM) dirancang, dan seluruh nitrit disamakan.

2.12.7. Penentuan Total Protein. Tingkat protein keseluruhan (mg/ml homogenat) dihitung menggunakan grafik kelengkungan atipikal albumin serum sapi dengan kekuatan larutan berkisar antara 0,3 hingga 3,8 mg/ml. Kombinasi pemeriksaan dilakukan dengan 250 μl homogenat, 5,1 ml reagen Lowry, buffer Na+-K+ [PO4]2-(900 µl), dan 1,1 N 500 µl FCR. Perbedaan OD diamati pada λmax � 650 nm [36].

2.13. Histopatologi Bagian Otak. Dengan menggunakan pengaturan difusi yang diberi makan gravitasi, tikus disebarkan secara intrakardial (melalui ventrikel kiri) dengan larutan formaldehida buffer netral (10% NBF) 10% dan dibius secara akut. Sektor hipokampus dan kortikal direndam dalam bahan fiksatif (fiksatif 10:1: proporsi jaringan), yaitu 10% NBF selama satu minggu (derajat 4), disertai natriumazid 0,04% (pH 7,4).

Etil alkohol (70%) digunakan sebagai larutan pengepakan untuk bagian jaringan tetap yang dijaga pada suhu 4 derajat. Pemotong mikrotom (tipe rotasi) digunakan untuk memperoleh bagian tipis (8,0 μm), yang kemudian diwarnai dengan pewarna hematoxylin dan eosin (H&E). .eslide dibuat permanen menggunakan resin DPX, yang kemudian ditutup dengan penutup dan diperiksa melalui mikroskop optik (teropong) dengan perbesaran ×40.

2.14. Analisis Statistik. Seorang peneliti terampil yang tidak mengetahui regimen obat lain-lain yang diberikan pada kelompok hewan, meneliti dan mengevaluasi data. Pencilan tidak bersifat pragmatis (uji Grubb) dalam data, dan uji Kolmogorov – Smirnov dan uji Levene masing-masing mengkonfirmasi distribusi normal variabel dan homogenitas varians (HOV p > 0.05, uji Levene).

Jika tidak, jika varians tidak sama (HOV p < {{0}}.05, uji Levene), ANOVA Welch (p < 0.05, F′-statistik) dan Tes post hoc Games–Howell dapat diterapkan. Rata-rata variabel yang berdistribusi normal diteliti dan dihubungkan dengan pengukuran analisis varians dua arah (ANOVA) satu arah atau berulang. Dalam kasus ANOVA, hasilnya signifikan (p <0,05) dalam statistik F, uji perbandingan berganda, yaitu HSD Tukey (perbedaan signifikan jujur) atau Bonferroni, diterapkan. Signifikansi statistik dianggap pada p <0,05, dan hasilnya dinyatakan sebagai mean-± Standard Error of Mean (SEM).

3. Hasil

3.1. Hasil DSM pada Massa Tubuh (g), Diet, dan Konsumsi Air pada Tikus yang Diberikan QA-ICV. Berat badan, pakan, dan konsumsi air dianalisis setiap minggu, mulai dari hari pertama. Penurunan yang signifikan (p <0.001) pada massa tubuh (g), pakan, dan asupan air pada hari ke 7, 14, dan 21 bersifat pragmatis pada tikus yang disuntik QA-ICV pada hari ke 1 jika dibandingkan dengan tikus palsu. (Gambar 2).

Dosis DSM (100 mg/kg) menyebabkan peningkatan berat badan yang signifikan (hari ke-7p < 0.05, hari ke-14 p < {{14} }.01, hari 21 p < {{20}}.001), pakan (hari 7p < 0.05, hari 14 p < 0.01, hari 21 p < 0.001), dan asupan air (hari 7 p <0,01, hari 14 p <0,05) pada tikus terhadap QA-ICV.

DSM (50 mg/kg) juga secara signifikan melemahkan penurunan berat badan yang dipicu QA-ICV (hari ke-21 p < 0.05) dan asupan pakan (hari ke-7 p < 0.{{20}}1) jumlah tikus dibandingkan dengan tikus yang hanya mendapat suntikan QA-ICV. Tikus yang diobati dengan QA-ICV dan DNP mengungkapkan peningkatan massa tubuh (g) yang signifikan (hari ke-7 < 0.05, hari ke-14 p < 0.001, hari ke-21 p <0,001), pakan (hari ke-7 p <0,001, hari ke-14 p <0,01, hari ke-21 p <0,001), dan asupan air (hari ke-7, 14, 21 p <0,01) relatif terhadap tikus yang tetap terpapar QA-ICV tunggal.

3.2. Pengaruh DSM terhadap Penggerak, Koordinasi Motorik, dan Kiprah Tikus terhadap QA-ICV. Dalam penelitian ini, aktivitas lokomotor hewan tidak dipengaruhi oleh QA-ICV atau perawatan obat.

Kelompok QA menggambarkan tidak ada perubahan signifikan dalam jumlah rata-rata per 5 menit pada peralatan aktofometer dibandingkan dengan kelompok palsu (Gambar 3(a)). Analisis rotarod dan jejak kaki digunakan untuk mengevaluasi kinerja sensorimotor dan gaya berjalan tikus.

Hasil penelitian menunjukkan bahwa QA-ICV secara signifikan menghambat (p <0.001) koordinasi motorik (Gambar 3(b)) dan gaya berjalan (Gambar 3(c)) tikus, yang tercermin dari penurunan latensi jatuh dari poros putar dan panjang langkah tikus dalam analisis jejak kaki dibandingkan dengan tikus palsu.

Grup QA + DSM50 dan QA + DSM100 menunjukkan peningkatan yang signifikan dalam penurunan latensi (p < 0.05, p < 0.01) dan panjang langkah (p <0,05, p <0,001) relatif terhadap kelompok QA.

Perlakuan DNP secara signifikan melemahkan QA-ICV dan memicu penurunan latensi jatuh (p < 0.001) dan panjang langkah (p < 0,001) bila dibandingkan dengan tikus yang diberikan QA-ICV saja. Selain itu, pengobatan DSM (100 mg/kg) menunjukkan peningkatan yang signifikan (p <0,01) dalam gaya berjalan dibandingkan DSM (50 mg/kg) pada tikus yang dikenakan QA-ICV.

For more information:1950477648nn@gmail.com